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              蛋白免疫印跡實驗的步驟講解及結果分析
              來源: 時間:2023-09-15 16:30:23 瀏覽:8575次

              蛋白免疫印跡實驗步驟講解及結果分析


              蛋白免疫印跡(Western blot)是一種常用的蛋白質檢測技術,能夠確定目標蛋白的存在、濃度和鑒定其分子量等特征。本文將詳細介紹蛋白免疫印跡實驗的步驟,并提供結果分析的指導。

               

               

               

              實驗步驟:

              一.樣品制備:

              蛋白免疫印跡實驗的第一步是樣品制備。通常,您可以從細胞培養物、動物組織或微生物培養物等樣品中收集蛋白質。在此過程中,您需要避免蛋白質的降解和失活。

              以下是一般的樣品制備步驟:

              a. 收集細胞或組織:使用適當的緩沖液洗滌細胞或組織,以去除雜質和外部污染物。

              b. 細胞破碎:加入蛋白提取緩沖液(含有蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑),破壞細胞膜和核膜,釋放蛋白質。

              c. 離心:將細胞裂解液或組織裂解液進行離心,去除細胞碎片和核酸等雜質。

              d. 收集上清液:將上清液轉移到新的離心管中,以去除未溶解的固體。

               

              二.蛋白質濃度測定:

              在進行免疫印跡實驗前,您需要確定蛋白質的濃度,以便加載相同的蛋白質量進行電泳分離。有幾種方法可用于測定蛋白質濃度,如BCA法或Bradford法。

              a. BCA法(雙硫鍵還原法):首先,準備一系列蛋白質標準溶液,使用乙醇胺胸腺嘧啶(BCA)試劑與蛋白質反應,生成可測定光密度的復合物。

              b. Bradford法:該方法使用考馬斯亮藍G-250試劑,該試劑與蛋白質結合形成深藍色物質,測量其吸光度。

               

              三.SDS-PAGE電泳:

              SDS-PAGE(聚丙烯酰胺凝膠電泳)是一種將蛋白質按照分子量大小進行分離的常見方法。以下是簡要的步驟:

              a. 準備凝膠:根據實驗需要選擇合適的聚丙烯酰胺凝膠濃度和孔隙度。通常使用10%至15%的凝膠。

              b. 配制電泳緩沖液:根據實驗室的標準操作程序制備Tris-緩沖溶液,加入適量的SDS和硫酸銨,調整pH值。將電泳緩沖液加入電泳槽中。

              c. 加載樣品:將樣品蛋白質與加載緩沖液混合,加熱至95°C,使之變性。然后,將樣品加載到凝膠孔中。

              d. 電泳:將凝膠浸入電泳槽中,將電泳槽兩端連接到電源,施加適當的電壓使蛋白質沿凝膠電泳。

              e. 停止電泳:當蛋白質移動到合適位置或接近凝膠底部時,停止電泳。

              f. 凝膠染色:使用染色劑(如Coomassie藍染液)對凝膠進行染色,以顯示蛋白質帶狀。

              g. 存儲凝膠:將凝膠轉移到顯影儀或圖像記錄系統中,記錄凝膠圖像以備后續分析使用。

               

              四.轉膜:

              轉膜是將凝膠上的蛋白質遷移到膜上的一個步驟,以便進行抗體的探針檢測。常用的膜材料有聚偏氟乙烯(PVDF)和硝酸纖維素(NC)。以下是轉膜步驟:

              a. 準備膜:切割適當大小的膜,并將其在轉膜緩沖液中濕潤。

              b. 電泳后處理:取出凝膠,將其在轉膜緩沖液中浸泡一段時間(通常為10-15分鐘),使蛋白質遷移到膜上。

              c. 轉膜裝置組裝:將濕潤的膜放在轉膜裝置上,層疊在凝膠上。確保膜與凝膠之間沒有氣泡。

              d. 轉膜操作:將轉膜裝置組裝到轉膜槽中,添加足夠的轉膜緩沖液,使其覆蓋整個膜和凝膠。連接上正負電極,施加適當的電壓,進行轉膜操作。

              e. 轉膜結束:當蛋白質完全轉移到膜上后,停止轉膜操作。取出膜并進行后續的處理。

               

              五.阻斷:

              在進行抗體結合之前,需要對轉膜膜進行阻斷,以避免非特異性結合和減少背景信號。一般會使用牛血清白蛋白(BSA)或脫脂奶粉作為阻斷劑。以下是阻斷步驟:

              a. 準備阻斷緩沖液:在TBST緩沖液中加入適量的阻斷劑(通常為5%脫脂奶粉或1% BSA)。

              b. 阻斷操作:將轉膜膜放入阻斷緩沖液中,輕輕搖晃,使其完全接觸。

              c. 阻斷時間:通常阻斷操作需要1-2小時,室溫進行。

               

              六.抗體孵育:

              抗體孵育是關鍵步驟之一,用于特異性結合目標蛋白。以下是抗體孵育步驟:

              a. 準備一次抗體:選擇與目標蛋白特異性結合的一次抗體。

              b. 稀釋抗體:根據供應商提供的建議或先前的優化實驗,將抗體稀釋到適當濃度的TBST緩沖液中。

              c. 抗體孵育:將轉膜膜放入含有稀釋抗體的TBST緩沖液中,使其與目標蛋白進行特異性結合。孵育溫度和時間根據抗體的要求進行設定。

              d. 洗滌:在抗體孵育后,將轉膜膜放入TBST緩沖液中進行洗滌,去除非特異性結合的抗體。

               

              七.二次抗體結合及探針檢測:

              在經過一次抗體結合后,通常需要使用與一次抗體相對應的二次抗體進行結合,該二次抗體與一個酶、熒光染料或放射性標記結合,以提供可檢測的信號。

              a. 選擇二次抗體:根據一次抗體的物種來源,選擇相應的二次抗體。

              b. 稀釋二次抗體:根據供應商提供的建議或先前的優化實驗,將二次抗體稀釋到適當濃度的TBST緩沖液中。

              c. 二次抗體結合:將轉膜膜放入含有稀釋二次抗體的TBST緩沖液中,使其與一次抗體進行結合。

              d. 探針檢測:根據二次抗體的標記物,選擇合適的方法進行探針檢測。例如,可以使用酶底物進行著色、熒光探針進行熒光檢測,或者用放射性探針進行放射性測量。

               

              八.圖像獲取及分析:

              使用分析系統(如顯影儀、熒光成像儀或放射性顯像系)獲取轉膜膜上的圖像,并進行后續的分析。以下是常見的圖像分析步驟:

              a. 圖像獲取:將轉膜膜放入相應的圖像獲取系統中,進行圖像記錄。

              b. 圖像分析:使用圖像處理軟件對圖像進行分析,測量蛋白質帶的密度和大小。

              c. 定量分析:通過與適當的內部參考蛋白或總蛋白的相對定量比較,確定目標蛋白的相對表達水平。

               

              結果分析:

              1.信號強度:根據圖像分析的結果,觀察目標蛋白帶在膜上的信號強度。較強的信號表示高蛋白質表達,較弱的信號可能表示低蛋白質表達。

              2.分子量大小:通過與分子量標記品對比,在凝膠上的目標蛋白帶遷移位置來估計其分子量大小。

              3.特異性:確保只有目標蛋白帶出現信號,而其他非特異性結合的蛋白不產生信號。檢查其他帶狀信號是否與預期的目標蛋白大小和形態相符。

              4.負對照和陽性對照:分析實驗中的負對照和陽性對照結果,以驗證實驗方法的有效性和可靠性。

              5.統計學分析:使用適當的統計學方法(如t檢驗或方差分析)對結果進行統計學分析,確定差異的顯著性。

              需要注意的是,蛋白免疫印跡實驗是一種復雜的技術,結果分析需要綜合考慮實驗中的多個因素,并結合之前的研究背景和目的進行解讀,對于結果的進一步分析和解釋,可能需要借助其他實驗或技術的支持。

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              全部 3小時前 四川
              文字是人類用符號記錄表達信息以傳之久遠的方式和工具。現代文字大多是記錄語言的工具。人類往往先有口頭的語言后產生書面文字,很多小語種,有語言但沒有文字。文字的不同體現了國家和民族的書面表達的方式和思維不同。文字使人類進入有歷史記錄的文明社會。
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